Tecnica de esterilizacion

Técnica de esterilización con autoclave

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLOGICO INDUSTRIAL Y DE SERVICIOS NO. 155.

EQUIPO MESA 6/ INTEGRANTES:
Acosta Flores Iván Ulises
Águila Cabrera Óscar Uriel
Castillo Villarreal Cesar Manuel
García Segura Erik Guadalupe
Martínez Miranda Roberto
Ponce Sánchez Erika
Yepiz Quezada Arturo Adrián

OPERAR EQUIPO Y MATERILAES DE LABORATORIO CLINICO.

PROFE: Víctor Manuel Alfaro López

GRUPO: 2L2M

PRACTICA NUMERO 2: TECNICA DE ESTERILIZACION.
Tijuana B.C. a 8 de junio de 2009.

Introducción:
La autoclave es una herramienta muy peligrosa si no se sabe utilizar adecuadamente, para eso es esta práctica para aprender a utilizarla.
Con esta práctica aprenderemos a utilizar el auto clave para así tener una mejor idea de ella y como utilizarla, para esto debemos seguir los pasos que nos da el instructor.

Objetivo
El objetivo principal de esta práctica es la esterilización del material de laboratorio como lo son los matraces con el medio de cultivo, para que el producto no salga contaminado y así la practica salga mal, siguiendo los pasos dados nos saldrá la practica y aun mejor si usamos el autoclave.

MATERIALES:
Matraces con medio de cultivo preparado.
Agua destilada
Autoclave
Guantes para calibrar la autoclave
Mesa de laboratorio
Cinta de esterilización

DESARROLLO
Ya terminado el medio de cultivo se paso a depositar el producto en la autoclave, junto con los demás medios de los compañeros de otros equipos.
Ya terminado ese proceso se vertió agua destilada a la autoclave hasta donde marcaba la olla para su respectivo uso.
Ya conectada la autoclave se paso a tapar la olla y así se empezó el proceso de esterilización, cuando esta llegaba a las 15 libras de presión se tenía que regular para que no pasara un accidente, para ello utilizábamos unos guantes para evitar quemaduras cuando liberábamos la válvula de presión ya que soltaba vapor a mucha presión, esto podría ocasionar accidentes por quemaduras de cierto grado.
Llegado el tiempo de esterilización que era de 20 minutos liberamos la válvula para despejar la olla y así sacar el medio de cultivo, la dejamos reposar por unos minutos para evitar quemarnos con los matraces.
Se desconecto la autoclave y pasamos a dejarla a su lugar de inicio.

medios de cultivo

Operar Equipo y Material de Laboratorio

Practica no. 1

Elaboración de medio de cultivo (reactivo)

Materiales:

• Cristalería:
• Matraz Elermeyer 250 ml
• Vaso de precipitado 250 ml
• Vidrio de reloj
• Probeta graduada 100 ml
• Varilla de cristal o agitador
• Espátula

Pesos y Medidas:

• Balanza granataria

Materiales de apoyo:

• Utilizar autoclave
• Mechero de bunsen
• Torundas de algodón secas
• Papel secante color café
• Cinta masquit teip color café

En reactivo:

· Medio de cultivo

Desarrollo en el laboratorio de análisis clínico del C.B.T.i.s. no 155

· Llegamos puntualmente al laboratorio indicado portando todo el equipo de bioseguridad.

· Dos miembros de la mesa reviso que las llaves del gas estuvieran abiertas para poder usar los mecheros, mientras los demás integrantes del equipo solicitaron vale de materiales para poder realizar correctamente la practica.

· Ya listos los materiales lo primero que hicimos fue preparar el campo de esterilización, usando papel blanco y alado dos mecheros de bunsen.

· Después de preparar el campo de esterilización pesamos el vidrio de reloj, lo cual su peso fue:19.4

· Se peso el polvo con el vidrio de reloj, realizando la regla de 3, para asi poder solicitar el agua destilada suficiente.

· Después de obtener la cantidad de polvo y del agua destilada se mezclaron en el matraz elermeyer, revolviendo la mezcla con la varilla de cristal para que no quedaran grumos.

· Finalizando este paso se tomo el matraz elermeyer con un guante para altas temperaturas, para poder pasar el matraz elermeyer con la mezcla sobre el mechero de bunsen hasta que la mezcla llegara al punto de ebullición.

· Ya estando el matraz elermeyer en su punto de ebullición de dejo reposar 1 minuto para poder continuar con el proceso.

· Durante este minuto de reposo del medio de cultivo cada uno de los integrantes de la mesa 6 realizo un borrador de todos los pasos que seguimos para poder realizar la practica correctamente.

· Después del reposo del medio de cultivo se tapo con torundas de algodón secas y tapándolas con cinta masquit teip, etiquetando el matraz con nombre del medio de cultivo, hora, fecha y numero de la mesa.

· Acabando de etiquetar el matraz se coloco en la autoclave ya anteriormente en funcionamiento al principio de la práctica.

· Así finalizamos la practica numero 1.

Practica no.9

MATERIALES

1. Sangre fresca 2.5ml
2. tubo de tapon morado con anticoagulante
3. palillos de madera
4. placa de porcelana escabada para tipo sangineo
5. algodon con alcohol
6. 2 torundas de algodon secas
7. masquin tape
8. tipyficadores para tipo sangineo (reactivo) antiA,antiB y antiD.
9. papel secante
10. papel para cubrir mesa
11. mesa lab.
12. pipeta pasteur y bulbo

DESARROLLO

1. Tecnica de venopuncion
2. Una vez obtenida la sangre fresca del paciente en vol. de 2.5ml se trasbasa al tubo de tapon morado con anticoagulante en el que se le da ligeros movimientos para que se mezcle con el anticoagulante y poder ser utilizada. Se utiliza la pipeta pasteur con bulbo de extraccion y se extrae una cantidad de sangre del tubo ya indicado para puntear una pequeña gota en cada escabacion en la placa de porcelana, el resto de la sangre se deposita en el tubo se enjuaga la pipeta y se ............................................................................ . Una vez punteada la placa escabada de porcelana se le agrega una gota de reactivo diferente en cada excabacion para poder obtener una reaccion entre sangre y el suero sangineo. Se aplica el reactivo antiA como numero uno y se registra el color , como numero 2 se aplica el antiB. Una vez obnetida la pruba de aglutinacion debemos reportar nuestro trabajo dentro del marco preanalitico , analitico y postanalitico.

Practica no. 8

MATERIALES

1. paciente
2. jeringa 5ml
3. torniquere
4. torundas alcolizadas
5. tubo con tapon rojo esterilizado sin anticuagulante
6. laminilla de cristal para prubas febriles o escabada
7. palillos de madera
8. papel secante
9. centrifuga
10. tubo de ensaye
11. microscopio
12. gradilla

DESARROLLO
Tecnica de venopuncion la cual ya se dio anteriormente.Una vez cuagulada la sangre , retiramos el tapon del tubo etiquetamos el tapon con el num. de mesa,datos del paciente,fecha e introducimos de forma ordenada a la centrifuga para operar la centrifugacion a 1500 reboluciones x minuto durante 5min.
Ya centrifugada la sangre se retira de la centrifuga. se vierte el plasma al tubo se desecha el paquete sanguineo utilizando la norma 087 en la cual debe dar un pequeño reporte, una vez que se tenga el plasma en el tubo indicado se realiza el conteo en la laminilla de cristal, utilizando una pipeta pasteur con bulbo.
Ya punteada la muestra ......................................................... se mezcla con palillos de maderea utilizando un pedazo x cada serotipo que es H,O,A,B,Brucella Abortus , Proteus 0x19
ya mezclados los serotipos se les da un ligero movimiento de enfrente hacia atras para estar seguros de que sea correcta.
NOTA: SE LE APLICA UNA GOTA DE FEBRICLIN A CADA UNO DE LOS SEROTIPOS ............................ PARA PODER OBTENER EL RESULTADO EN ESTA PRUEBA LA CUAL ES AGLUTINACION.
La observacion es macroscopica..................... asi como .................................. en objetivo 10x de esta manera se aplicara ...................................................................................... de forma punteada como arenilla en liq. observado y se determina como (+) si no existe ninguno de lso datos y la muestra se ve homogenea se determina (-).

Venopuncion

La venopunción es la recolección de sangre de una vena, generalmente tomada por un laboratorista, un personal de enfermería, un médico, paramédico o un estudiante de estas profesiones. También se conoce con los nombres alternativos de extracción de sangre o flebotomía. Por lo general se extraen de 5 a 25 ml para que una muestra sea considerada adecuada para el tipo de pruebas sanguíneas que se hayan solicitado. La sangre se coloca en un tubo de ensayo comercialmente preparado para transportar la sangre y conservarla de manera apropiada según los requerimientos del laboratorio que procesará la muestra.
Ocasionalmente se extraen minúsculas cantidades de sangre como muestras de pacientes diabéticos, recién nacidos o previos a una donación de sangre. También se realiza una venopunción para una donación de sangre o en pacientes con policitemia, de quienes se extraen unos 350-500 cc de sangre. Los exámenes hechos en la sangre o en partes de ésta le pueden suministrar claves importantes al médico acerca de la salud de la persona, orientándolo hacia el diagnóstico y/o tratamiento.

bacterias con nombre de coco

bacterias con nombres de coco:

Diplococo:
Los diplococos son un conjunto de bacterias que se caracterizan por ser cocos asociados formando parejas.

Neumococo:
El neumococo, Streptococcus pneumoniae, es un microorganismo patógeno capaz de causar en humanos diversas infecciones y procesos invasivos severos. Se trata de una bacteria Gram positiva de 1,2-1,8 µm de longitud, que presenta una forma oval y el extremo distal lanceolado. Es inmóvil, no forma endosporas, y es un miembro alpha-hemolítico del género Streptococcus . Generalmente, se presenta en forma de diplococo.

Meningococo:
La Neisseria meningitidis, también conocida por su nombre más simple de meningococo, es una bacteria diplocóccica heterótrofa gram negativa, de importancia en salud pública por su papel en la meningitis y otras formas de enfermedad meningocóccica. Sólo afecta a seres humanos ya que no existe ningún reservorio. Es la única forma conocida de meningitis bacteriana en causar epidemias.

Gonococo:
Neisseria gonorrhoeae es un agente etiológico de gonococia, una enfermedad de transmisión sexual. Es un diplococo Gram negativo, oxidasa positivo, como todas las Neisserias. Se diferencia del resto por la prueba de la fermentación de carbohidratos, fermentando solamente a la glucosa. Se caracteriza por ser de difícil cultivo, siendo muy exigente a nivel nutricional y a la vez muy sensible a sustancias que se encuentran en los medios de cultivo corrientes. Suele utilizarse para este fin medios no selectivos enriquecidos con factores de crecimiento o selectivos, logrado con una mezcla de antibióticos, como el medio de Thayer-Martin con vancomicina, nistatina, colimicina y trimetoprim-sulfametoxazol). Requiere una atmósfera con 5-10% de CO2.

Estafilococo:
El género Staphylococcus comprende microorganismos que están presentes en la mucosa y en la piel de los humanos y de otros mamíferos y aves, incluyendo a 35 especies y 17 subespecies, muchas de las cuales se encuentran en los humanos. Las especies que se asocian con más frecuencia a las enfermedades en humanos son Staphylococcus aureus (el miembro más virulento y conocido del género.

Tincion d gram

Tincion de gram:

La tinción de Gram o coloración Gram es un tipo de tinción diferencial empleado en microbiología para la visualización de bacterias, sobre todo en muestras clínicas. Debe su nombre al bacteriólogo danés Christian Gram, que desarrolló la técnica en 1884. Se utiliza tanto para poder referirse a la morfología celular bacteriana como para poder realizar una primera aproximación a la diferenciación bacteriana, considerándose Bacteria Gram positiva a las bacterias que se visualizan de color violeta y Bacteria Gram negativa a las que se visualizan de color rosa.


Bacteria gram negativas:

En microbiología, se denominan bacterias Gram negativas a aquellas bacterias que no se tiñen de azul oscuro o violeta por la tinción de Gram: de ahí el nombre de "Gram-negativas" o también "gramnegativas".[1] Esta característica está íntimamente ligada a la estructura de la envoltura celular, por lo que refleja un tipo natural de organización bacteriana. Son uno de los principales grupos de bacterias y cuando se tratan como taxón se utiliza también el nombre de Negibacteria.[2] Las restantes son las bacterias Gram positivas.

Las bacterias Gram-negativas presentan dos membranas lipídicas entre las que se localiza una fina pared celular de peptidoglicano, mientras que las bacterias Gram-positivas presentan sólo una membrana lipídica y la pared de peptiglicano es mucho más gruesa. Al ser la pared fina, no retiene el colorante durante la tinción de Gram.[3



Bacteria gram positiva:

En microbiología, se denominan bacterias Gram positivas a aquellas bacterias que se tiñen de azul oscuro o violeta por la tinción de Gram: de aquí el nombre de "Gram-positivas" o también "grampositivas". Esta característica está íntimamente ligada a la estructura de la envoltura celular por lo que refleja un tipo natural de organización bacteriana. Son uno de los principales grupos de bacterias, y cuando se tratan como taxón se utiliza también el nombre de Posibacteria. Las restantes son las bacterias Gram negativas
La envoltura celular de las bacterias Gram-positivas comprende la membrana citoplasmática y una pared celular compuesta por una gruesa capa de peptidoglicano, que rodea a la anterior. La pared celular se une a la membrana citoplasmática mediante moléculas de ácido lipoteicoico. La capa de peptidoglicano confiere una gran resistencia a estas bacterias y es la responsable de retener el tinte durante la tinción de Gram. A diferencia de las Gram-negativas, estas bacterias no presentan una segunda membrana lipídica externa.

concepto frotis

Un frotis de sangre es un proceso científico que consiste en el extendido de una gota de sangre en la superficie de un portaobjetos o de un cubreobjetos, con el fin de analizarla posteriormente.

Es más adecuado emplear sangre que aun no ha estado en contacto con el anticoagulante, pues este podría alterar los resultados (algunos anticoagulantes tienden a deformar las células de la sangre).

Practica no. 7

PRACTICA 7 OBSERVACION MICROSCOPICA EN ONBETIVO DE 100x con Aceite de palo (aceite de inmersión)

Una vez terminada la tinción en la laminilla de cristal séle aplica una gota de aceite de inmersión para poder observarlo

MATERIALES.

Laminilla de cristal teñida
Aceite de inmersión
Hoja de papel para limpiar el microscopio (compuesto o fotónico)
Torunda de algodón seca y con alcohol
Papel secante

DESARROLLO:

1-la laminilla séle deposita una gota de aceite de inmersión
2-se monta la laminilla al microscopio sobre la platina y que quede bien ajustada con las pinzas de la platina.
3-observamos en el objetivo de 100x para poder clasificar las estructuras de los microorganismos encontrados que son esferas, rueditas o bolitas en 1, 2, 3,4, en cadena de 5 o 6 o agrupadas en bastones y séles del nombre de bacilos y rueditas

practica no. 6

PRACTICA 6 TINCION DE GRAM.

El alumno debe investigar el tema de tinción de gram. Que se utiliza para bacterias Gram. Positivas y Gram. Negativas.

Este trabajo de investigación es vital para poder realizar la secuencia de la técnica de tinción de esta practica del medio de cultivo.

MATERIALES:

Frotis realizado y fijado en portaobjetos, el cual debe pasar al proceso de tinción utilizando la técnica de forma correcta y anteriormente investigada.

Esta técnica se basa en 9 pasos donde se aplican los tiempos necesarios.

El frotis debe pasarse en el proceso de tinción sin pasar de los tiempos indicados ya que se puede quemar el producto realizado lo que ocasionaría volverlo a realizar desde el principio (debemos hacer bien las cosas ya que el tiempo es el enemigo),

Si el frotis queda bien teñido se dejara listo para el siguiente proceso que es la observación microscópica.

Practica no:5

PRACTICA 5 ELABORACION DE UN FROTIS.

El alumno de laboratorio de análisis clínicos debe realizar un trabajo de investigación muy sencillo en materia de frotis el cual después de su investigación bibliográfica debe realizar de forma práctica.

MATERIALES:

Cajas petri con medio de cultivo y microorganismos en desarrollo(los que crecieron)
Asa bacteriológica de platino
Mecheros de bunsen
Vaso de precipitado de 50ml
25ml de agua destilada en el vaso de precipitado
Torundas de algodón
Portaobjetos.

DESARROLLO

1 con el asa bacteriológica se va a realizar un frotis en un portaobjetos de cristal.

2 se toma el asa bacteriológica se pone en la flama del mechero dejándola al rojo vivo para que se esterilicé, se retira del fuego, se toma una pequeña gota de agua destilada, con ella misma se extrae una pequeña muestra del material bacteriológico crecido en las cajas petri.

Unas ves teniendo este material en el asa se acude a depositarlo en el portaobjetos en su parte central.

Desplazando de izquierda a derecha el material bacteriológico hasta que quede una película delgada, una ves teniéndola verificamos con el instructor si ya esta lista para poder fijarla al calor.

Ya realizado el frotis se fija de forma directa, se toma el portaobjetos en sus partes alo largo para su transporte.

Se toma el portaobjetos de forma lateral para poderlo pasar encima de la llama nunca dejar en forma directa en la flama.

Una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción.

Practica no. 4

Practica 4 observación microscópica de cajas petri

MATERIALES

1-solicitar las cajas petri ya con medio de cultivo elaborado
2-vernier o pie de rey
3-4 torundas de algodón seco
4-torundas de algodón alcoholizadas
5-registrar observaciones en cajas petri
6-2 mecheros de bunsen

DESARROLLO

1-se deposita las cajas petri en mesa de laboratorio para su observación, previamente la mesa vestida de papel blanco

2-observamos de forma microscópica los crecimientos de microorganismos en medio del cultivo anotando colores, olores, dimensión desde la mas pequeña hasta la mas grande, para ello necesitamos abrir la caja en nuestro campo de esterilización a base de los 2 mecheros

3-para poder medir las colonias de microorganismos utilizaremos una herramienta de medición denominada vernier, medimos y anotamos con su prespectivo grafico

NOTA: para poder realizar todos los trabajos en borrador y que sus gráficos sean presentes debemos contar con colores y bicolores y para poderlo subir al blog tomar gráficos de cámara fotográfica.

4-cada grafico debe llevar el pie de grafico o pie de foto donde nos indica la información de lo que estamos plasmando.

Practica no: 3

PRACTICA 3 siembra

Materiales

1 asa
2 vasos de precipitado con agua destilada (15 a 20 ml)
3 mecheros de bunsen
4 cajas petri con medio de cultivo elaborado
5 papel para cubrir mesa de laboratorio
6 masquintape para etiquetar cajas petri
7 jeringa desechable (5ml)
8 torniquetes
9 torundas de algodón alcoholizadas
10 tubos de ensaye (tapón rojo)
11 centrifuga
12 tubo cónico para orina
13 cubreobjeto y portaobjeto

Muestras de producto de desecho

1 toma de muestra (2.5ml de sangre) se deposita en el tubo de tapón rojo
2 orina (6 botes para orina) 1 portaobjeto
3 muestra de cavidad oral en espacios interdentales (hisopos)
4 agua preparada en la calle (aguas frescas)
5 raspado interdigital con portaobjetos.

Desarrollo:

Se realiza el proceso de siembra por estrías en medio de cultivo que contiene las cajas petri siendo este sólido.

Se utiliza el asa bacteriológica, pasándola por el mechero y al ponerse al rojo vivo esta queda esterilizada. Una ve esterilizada el asa se toma una pequeña gota de agua destilada y se pasa a tomar la muestra de desecho que se pretende observar esto es en 2 materiales de preferencia sólidos.

Para los materiales líquidos solo se esteriliza, se toma el producto y se aplica en la caja petri realizando una siembra en forma de estrías de los 7 tipos mostrados en el pizarrón.

Para poder sembrar una muestra de caveado de oral de espacio interdental se requiere un hisopo esterilizado, tomando la muestra del paciente en su cavidad oral y se aplica en caja petri en forma de estriado. Dentro de los 7 modelos de siembra, uno de ellos requiere varilla de cristal para poder sembrar el producto el cual séle da el nombre de siembra de dispersión.

Las cajas petri sembradas se deben depositar en la estufa de incubación a 37 grados centígrados.


Durante el proceso practico debemos realizar nuestra bitácora de actividades, elaborando en 1 hoja cuadriculada para asignar cada una de la actividades enumeradas llevando secuencia en tiempos y en la cual debemos anotar fechas de trabajo realizado.

Practica no: 2

Técnicas de esterilización (calor húmedo) PRACTICA 2

Se esteriliza el producto a 15 libras de presión y una temperatura de 120 grados centígrados durante 20 minutos.

Una vez terminada la esterilización se deja enfriar, el producto se libera de la autoclave, se entrega a las mesas y se hará el vaciado en cajas petri.

Para el vaciado en cajas petri se requiere un campo de esterilización en la mesa con 2 mecheros para que el producto este en el centro del campo de esterilización del mechero.

11 Se utiliza el vaso de precipitado de 250 ml el cual se pasara en forma breve por el fuego, para que este esterilizado (se pasara con la boquilla abierta) séle vierte el producto con la cantidad requerida y se vacía el producto con la cantidad requerida y se vacía ala caja petri, dejándola abierta con su tapa sobrepuesta asta que se enfríe, esto se hará las veces necesarias en nado de cajas.

Ya estando sólido el medio de cultivo se tapa, se etiqueta y se deposita en el enfriador, con el nombre de la mesa, grupo, datos del medio de cultivo.

Conclusiones de la practica, bibliografía de los medios de cultivo, glosario.

Practica no: 1

Practica 1 MEDIO DE CULTIVO (reactivo)

1 objetivo realizado por el alumno
2 introducción
3 índice
4 materiales
5 instrucciones

Instrucciones

1- llegar puntualmente al laboratorio, disponer de equipo de bioseguridad para realizar trabajo del laboratorio (5 minutos para cambiarnos)

2- solicitar vale para materiales del laboratorio, vestir mesa del laboratorio con papel blanco para mantener un campo estéril.

3- Un alumno de los que estén dentro del laboratorio para realizar la práctica debe de anotar en el pizarrón los materiales que se ocuparan en la misma.

4 -MATERIALES PARA MEDIO DE CULTIVO
Cristalería
Matraz elermeyer de 250 ml
Vaso de precipitado de 250 ml
Probeta graduada de 100 ml
Vaso de precipitado de 50 ml
Vidrio de reloj
Varilla de cristal o agitador
Espátula

PESOS Y MEDIDAS
Balanza granataria

MATERIALES DE APOYO
Autoclave (técnica de esterilización)
Mechero de bunsen o mechero de Fisher
Torundas de algodón secas
Papel secante de color café
Cinta masquintape de color café
Agua destilada

INDICACIONES PARA EL DESARROLLO DEL MEDIO DE CULTIVO

1- pesar el polvo de medio de cultivo utilizando el vidrio de reloj, realizando la regla de tres

2- solicitar al laboratorio agua destilada dependiendo la cantidad del producto que se valla a ocupar en cajas petri siendo un total de 7 cajas petri por mesa

3- una vez pesado el polvo del medio de cultivo se mezcla en el contenido de agua que se tiene en el vaso de precipitado de 250ml
4- para poder mezclar y que no queden grumos se utiliza la varilla del cristal para agitar con forma en las manecillas del reloj hasta que se disuelva el polvo en el agua.

5- una vez que ya tenemos la mezcla echa dejamos reposar el producto de acuerdo a las indicaciones que contiene el deposito del medio de cultivo.

NOTA: las indicaciones del medio de cultivo que contiene la etiqueta del depósito se debe transcribir para conocer bien los datos.

6- séle da el nombre de rehidratar al polvo con el agua y observando las indicaciones dadas se tomara el porcentaje requerido de polvo para la mezcla con el agua que soliciten de acuerdo a las cajas petri que se vallan a prepara.

7- después del reposo del producto séle da movimientos en rotación a fuego de muñeca exponiendo al fuego del mechero estos movimientos y exposición darán como resultado una ebullición (hervor) y séle dará desde el momento que inicia la ebullición 1 minuto de tiempo para que quede listo nuestro medio de cultivo en forma liquida.

8- se debe tener cuidado con la ebullición del producto en el matraz de elermeyer ya que este puede rebasar sus limites y ocasionar un accidente por quemaduras.

Una ves terminada el proceso de ebullición del medio de cultivo se deja enfriar, se taponea con torundas de algodón, se cubre con cinta masquintape, se registra con los datos del medio de cultivo, numero de mesa y fecha de elaboración.

9- los integrantes se pondrán de acuerdo para la esterilización de materiales y el medio se deposita en autoclave.

Proteus

Ficha taxonomica

Dominio:
Bacteria
Filo:
Proteobacteria
Clase:
Gamma Proteobacteria
Orden:
Enterobacteriales
Familia:
Enterobacteriaceae
Género:
Proteus

salmonella typhi

Ficha taxonomica

Reino:
Bacteria
Filo:
Proteobacteria
Clase:
Gamma Proteobacteria
Orden:
Enterobacteriales
Familia:
Enterobacteriaceae
Género:
Salmonella

Brucella Abortus

Ficha taxonomica

Dominio: Bacteria
Filo: Proteobacteria
Clase: Proteobacteria alfa
Orden: Rhizobiales
Familia: Brucellaceae
Género: Brucella

paramecium

Ficha taxonomica

Reino: Protista
Filo: Ciliophora
Clase: Oligohymenophorea
Orden: Peniculida
Familia: Parameciidae
Género: Paramecium

escherichia-coli

Ficha taxonomica

Reino: Bacteria
Filo: Proteo bacteria
Clase: Gamma Proteo bacteria
Orden: Entero bacteriales
Familia: Enterobacteriaceae
Género: Escherichia
Especie: E. coli

Caracteristicas coloniales y morfologicas de brucella abortus-

Caracteristicas morfologicas

Características morfológicas: Brucella abortus son Gram-negativas en forma de vara de bacterias que no tienen flagelos o pili, ni crear cápsula limo. They also does not produce spores. Asimismo, no produce esporas. This heterotrophic bacteria carries out either aerobic or anaerobic respiration because it is a facultative bacterium (5). Esta bacterias heterótrofas realiza bien la respiración aeróbica o anaeróbica, ya que es una bacteria facultativa (5). This means that the bacteria can grow with or without oxygen present. Esto significa que las bacterias pueden crecer con o sin oxígeno. In order to grow Brucella abortus , a very complex media is required, because it is a fastidious bacteria that requires most essential nutrients to be imported into the cell from the host (4). Para crecer Brucella abortus, un complejo de medios de comunicación es muy necesaria, porque es una bacteria fastidiosa que requiere más nutrientes esenciales a ser importados en la célula del huésped (4). Although it is a fastidious bacteria, Brucella abortus does have “all major biosynthetic pathways” (5) available to it. Aunque se trata de un fastidioso bacterias, Brucella abortus tiene "todas las principales vías de biosíntesi, son cocobacitos muy pequeños(0.4 por 0.8, um)

Características coloniales: las colonias son no pigmentadas y no hemolíticas: aparecen como colonias puntiformes después de 48 horas de incubación.

Caracteristicas coloniales y mofologicas de escherichia coli

Caracteristicas morfologicas

Características morfológicas: Ésta y otras bacterias son necesarias para el funcionamiento correcto del proceso digestivo. Además produce vitaminas B y K. Es un bacilo que reacciona negativamente a la tinción de Gram (gramnegativo), es anaeróbico facultativo, móvil por flagelos peritricos (que rodean su cuerpo), no forma esporas, es capaz de fermentar la glucosa y la lactosa y su prueba de IMVIC es ++--.

Características coloniales: La Escherichia coli es capaz de formar con una fina película colonias encapsuladas entre las células epiteliales de la vejiga que protruyen hacia el lumen como microampollas y resisten a los antibióticos y a la inflamación.

Caracteristicas coloniales y mofologicas de paramecium

Caracteristicas morfologicas

Características morfológicas: Carecen de flagelos, pero los cilios son muy abundantes y recubren toda su superficie. A ellos les corresponde proporcionar movimiento al organismo. La membrana externa absorbe y expulsa regularmente el agua del exterior con el fin de controlar la osmorregulación, proceso dirigido por dos vacuolas contráctiles.
En su anatomía destaca el citostoma, una especie de invaginación situada a todo lo largo del paramecio de la que éste se sirve para capturar el alimento, conformado por partículas orgánicas flotantes y microorganismos menores. El citostoma conduce a una citofaringe antes de que el alimento pase al interior de este protozoo. Otros orgánulos de fácil observación son el núcleo eucariota, situado junto a un "micronúcleo" en el centro del paramecio, y las vacuolas digestivas, que digieren constantemente el alimento capturado. Los desechos se expulsan por exocitosis, mediante vacuolas de secreción que se originan a partir de las digestivas.
Como muchos otros microorganismos, los paramecios se reproducen asexualmente.

Características coloniales: Es un ciliado común en las aguas dulces que contienen restos vegetales es putrefacción. En el laboratorio se multiplican rápidamente en una infusión preparada hirviendo un poco de paja o algunos granos de trigo en agua.

Caracteristicas coloniales y morfologicas de salmonella

Caracteristicas morfologicas de salmonella typhi

Características morfológica., formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos peritricos y que no desarrollan cápsula ni esporas. Son bacterias móviles que producen sulfuro de hidrógeno (H2S). Fermentan glucosa por poseer una enzima especializada, pero no lactosa, y no producen ureasa.

caracteristicas coloniales de la salmonella: Inocular en superficie por estría a partir de un medio de enriquecimiento selectivo
Utilizado para la detección de Salmonella.
- Incubar a 37°C durante 24 horas.

Oraganos que afecta proteus

Organos que afecta proteus

Se deposita en el tracto intestinal.
Infecciones del tracto urinario, además afecta ala próstata y testículos.

Organos que afecta brucella abortus

Organos que afecta brucella abortus

•Osteoarticular (20%-35%): sacroileitis, uni o bilateral, artritis periféricas y espondilitis.
•Genitourinarias (2%-20%): orquiepididimitis unilateral, la forma necrotizante es infrecuente y puede no responder a tratamiento antibiótico y requerir orquiectomía5
•Sistema nervioso central (2%-5%): meningitis aguda o meningoencefalitis, también se han descrito abscesos subdurales y epidurales, encefalitis, mielitis, trombosis de senos venosos e hidrocefalia.
•Endocarditis: Es la mayor causa de muerte en pacientes con brucelosis, aunque es poco habitual (menos del 2% de los casos). Se afectan tanto válvulas sanas como previamente dañadas y la válvula aórtica con mayor frecuencia que la mitral. Suele producirse destrucción de las válvulas y ocasionalmente abscesos.
•Absceso hepático (1%): Es usual la elevación de las enzimas hepáticas en los primeros estadios de la enfermedad (30%-60% de los pacientes), hepatomegalia en un porcentaje inferior.
•Otras: incluyen abscesos esplénicos, tiroides o epidurales. Neumonitis, derrame pleural, empiema, colecistitis, uveítis e infección de prótesis y marcapasos.

la brucella penetra en los macrofagos dentro de vesiculas, membranas que no son fusionadas con los lisosomas.

Organos que afecta salmonella typhi

Organos que afecta salmonella typhi

Afecta y se deposita la bacteria en el corazón, pulmón, riñón, la vesícula y entre otras zonas.

Sintomas que causa proteus

Sintomas que causa proteus

SINTOMAS PARTICULARES DE PROTEUS ** 8 Vértigo, con la sensación de que el piso sube a su encuentro. Cefalea frontal con pesadez. Cefalea que aparece de mañana; peor premenstrual; o con diarrea y lengua saburral. Intensa sensación de tensión intracraneal. Jaqueca con náuseas. Caída de cabellos. * 9 Dolores ardientes en los ojos, que están rojos, con fotofobia. Puntadas agudas en los ojos, mejor por la presión.
Be luces de colores, con vértigo. Visión disminuida intermitentemente. 10 Dolores agudos, ardientes, como por una otitis, pero sin fiebre. ** 11 Obstrucción nasal agravada en sitios cerrados. Sensación de descarga de mucosidad grasosa hacia atrás, de mañana. 12 Grietas en las comieras labiales. Gusto a sal en la boca. Ulceras bucales. Encías sensibles. ** 13 Pirosis. Accesos de hambre dolorosa, que no mejora comiendo. Náuseas y jaqueca después de comer. Vómitos por el menor esfuerzo. Frecuente hipo después de comer. Aerofagia; se mete los dedos para expulsar el aire. Gastralgias, a veces de noche. Hematemesis. ** 14 Diarrea emotiva. Diarrea con cefalea y lengua saburral; heces blandas, amarillas, a la mañana después del desayuno. Alterna diarrea y constipación. Constipación con deseos ineficaces. Melena. Oxiuriasis. Abscesos anales. Hemorroides sangrantes con intenso prurito. * 15 Cistitis por comer cerdo. Dolores ardientes violentos en la uretra. Orina turbia y fétida; con fibras blanquecinas. * 16 Menstruaciones con coágulos; coágulos fibrosos al terminar la menstruación. Flujo premenstrual marrón y estriado de sangre. Flujo blanco copioso durante la ovulación. Prurito vulvar. Abscesos vulvares. Vaginitis. 17 Laringitis subaguda con dificultad para hablar. Tos con expectoración. * 18 Sensación de peso precordial. Dolor precordial por esfuerzos. Palpitaciones por la menor emoción, o acostado. Frecuente bloqueo de rama derecha en el electrocardiograma. ** 19 Dolor lumbar. Las manos están como muertas de noche, por espasmos de las arteriolas. Manos ardientes de noche; dormidas a la mañana. Contractura en flexión del meñique. No puede cerrar la mano. Sudores copiosos de las axilas, que caen en grandes gotas; manos pegajosas. Las uñas se rompen. Vesículas pruriginosas en el lado externo de muñecas y dedos. Claudicación intermitente. Dolor en la pantorrilla, que lo obliga a caminar con un bastón. Pies dormidos, como congelados, peor por agua fría. Dolor ciático. Dedos de pies en martillo. * 20 Prurito intenso. Erupciones papulosas, pustulosas, eritema tosas, secas, que se pelan, en el mentón y labio superior.

Sintomas que causa la brucella abortus

Sintomas que causa la brucella abortus

La brucelosis, también conocida como fiebre de Malta, es una enfermedad infecciosa que se presenta con episodios recurrentes de fiebre, debilidad, sudoración y dolores vagos. Es provocada por una bacteria llamada Brucella, que está en la sangre, las secreciones y la leche de vacas, cerdos, ovejas y cabras.

Las personas pueden infectarse al ingerir leche de vaca, de oveja o de cabra o sus derivados (manteca, quesos) que contengan microorganismos viables, es decir productos que hayan sido fabricados con leche sin pasteurizar. También se adquiere por contacto directo con animales infectados o sus productos (manejo de sangre, orina, descargas vaginales, fetos abortados y placentas de animales infectados), razón por lo que se considera que es una enfermedad profesional de veterinarios, carniceros, granjeros y ganaderos.

Sintomas que causa la samonella typhi

Sintomas que causa la salmonella typhi

• Dolor de cabeza severo
• Fiebre
• Pérdida del apetito
• Incomodidad general, inquietud o malestar general
• Salpullido (manchas rosa) sobre la parte baja del tórax y abdomen durante la segunda semana de fiebre
• Sensibilidad abdominal
• Estreñimiento, después diarrea
• Heces con sangre
• Lentitud, inactividad, letargo
• Fatiga
• Debilidad
• Sangrado nasal
• Escalofríos
• Delirio
• Confusión
• Agitación
• Alteraciones del estado de ánimo
• Dificultad para fijar la atención (falta de atención)
• Alucinaciones